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A codificação do toque por subdivisões da coluna dorsal alinhadas somatotopicamente

Dec 30, 2023Dec 30, 2023

Nature volume 612, páginas 310–315 (2022) Citar este artigo

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Detalhes das métricas

O sistema somatossensorial decodifica uma gama de estímulos táteis para gerar uma sensação coerente de toque. O toque discriminativo do corpo depende de sinais transmitidos de mecanorreceptores periféricos para o cérebro através da coluna dorsal da medula espinhal e seu alvo no tronco cerebral, os núcleos da coluna dorsal (DCN)1,2. Modelos de somatosensação enfatizam que mecanorreceptores de baixo limiar (LTMRs) de condução rápida que inervam a pele conduzem o DCN3,4. No entanto, os neurônios da coluna dorsal pós-sináptica (PSDC) dentro do corno dorsal da medula espinhal também coletam sinais de mecanorreceptores e formam uma segunda entrada principal para o DCN5,6,7. O significado dos neurônios PSDC e suas contribuições para a codificação do toque permaneceram incertos desde sua descoberta. Aqui mostramos que a entrada direta de LTMR para o DCN transmite estímulos vibrotáteis com alta precisão temporal. Por outro lado, os neurônios PSDC codificam principalmente o início do toque e a intensidade do contato sustentado na faixa de alta força. Os sinais LTMR e PSDC realinham-se topograficamente no DCN para preservar detalhes espaciais precisos. Diferentes subtipos de neurônios DCN têm respostas especializadas que são geradas por combinações distintas de entradas LTMR e PSDC. Assim, as subdivisões LTMR e PSDC da coluna dorsal codificam diferentes características táteis e convergem diferencialmente no DCN para gerar fluxos de processamento sensorial ascendente específicos.

Os LTMRs de condução rápida (Aβ-LTMRs) detectam forças mecânicas leves atuando na pele e medeiam o toque discriminativo8,9,10,11. Os sinais de Aβ-LTMR são rapidamente transmitidos da periferia e seus axônios sobem a coluna dorsal da medula espinhal e entram em contato direto com o DCN do tronco cerebral. A partir do DCN, as informações mecanossensoriais são retransmitidas para vários alvos nas regiões superiores do cérebro. A maioria das informações sensoriais é transmitida do DCN para o córtex somatossensorial por meio de uma projeção proeminente para o tálamo póstero-lateral ventral somatossensorial (VPL) para a percepção consciente do toque. Uma população separada e menos conhecida de neurônios DCN transmite informações táteis ao córtex externo do colículo inferior (IC)12,13. Nessa região do cérebro, a informação é integrada e contextualizada com a informação auditiva. Outras populações de neurônios DCN se projetam para o sistema olivocerebelar14,15 para coordenar a adaptação motora. Os neurônios DCN também podem se projetar para núcleos talâmicos secundários16 envolvidos no estado afetivo e para a medula espinhal e substância cinzenta periaquedutal14,16. Assim, o DCN é um canal de entrada de sinais mecanossensoriais e amplamente conecta mecanorreceptores na periferia a várias áreas principais do cérebro17.

A codificação somatossensorial em neurônios DCN é heterogênea18,19,20,21, mas como os sinais táteis são organizados dentro do DCN e distribuídos para alvos a jusante permanece desconhecido. Usando camundongos, procuramos determinar como as representações sensoriais do membro posterior são codificadas nesse estágio inicial da hierarquia somatossensorial. Para conseguir isso, registramos seletivamente subtipos de neurônios no DCN (o núcleo grácil; dados estendidos Fig. 1) em camundongos usando ativação antidrômica e marcação optogenética.

Diferentes tipos de neurônios DCN codificaram aspectos distintos de estímulos mecanossensoriais adequados aos seus alvos de projeção. Os neurônios de projeção VPL (VPL-PNs) são o tipo de célula mais abundante no DCN, superando os neurônios de projeção IC (IC-PNs) e os interneurônios inibitórios locais (VGAT-INs) com uma proporção estimada de VPL-PN:IC-PN:VGAT -IN de 2:1:1 (ref. 13). VPL-PNs tinham pequenos campos receptivos excitatórios com grandes regiões de supressão surround (Fig. 1a-c,pq). Esses VPL-PNs podem levar seu disparo à vibração mecânica; no entanto, para a maioria, esse arrastamento foi restrito a uma faixa estreita de frequências abaixo de 150 Hz (Fig. 1c,d). Os neurônios DCN que se projetam para o IC podem ser classificados em vários subgrupos (Dados Estendidos Fig. 2), mas mais comumente tinham campos receptivos grandes e exclusivamente excitatórios que incluíam todo o membro posterior (Fig. 1f-h,p). Ao contrário dos VPL-PNs, a maioria dos IC-PNs poderia levar seu disparo à vibração mecânica em uma ampla faixa de frequências (Fig. 1h-i). A vibração do membro posterior evocou potenciais de ação sincronizados com precisão que foram arrastados e travados em fase para vibrações que variaram de 10 Hz a 500 Hz, a frequência mais alta testada. Assim, os neurônios que se projetam para o VPL são sintonizados para transmitir informações espaciais finamente detalhadas. Por outro lado, os neurônios que se projetam para o IC codificam mal os detalhes espaciais e são mais adequados para codificar uma ampla gama de vibrações mecânicas que podem ser correlacionadas com estímulos auditivos. Os VGAT-INs tinham uma ampla gama de tamanhos de campo receptivo, careciam de contornos inibitórios e, ao contrário dos PNs, geralmente careciam de disparo espontâneo (Fig. 1k–n,p–r). Todos os três tipos de células DCN se adaptaram rapidamente a indentações em degraus com forças baixas (Fig. 1e,j,o). Em contraste com outros tipos de células, os VPL-PNs codificaram de forma mais confiável a fase estática da indentação sustentada de alta força, substancialmente acima das forças nas quais os Aβ-LTMRs de adaptação rápida e adaptação lenta atingem o platô22,23,24,25 (Fig. 1e).

5 weeks) of both sexes. The following mouse lines were used: C57Bl/J6; Cdx2cre (ref. 48); Calca-FlpE (ref. 49); AvilFlpO (ref. 49); Avilcre (ref. 50); Rosa26LSL-Acr1 (ref. 51); and Rosa26FSF-ReaChR (derived from ref. 52). Animals were maintained on mixed C57Bl/J6 and 129S1/SvImJ backgrounds. C57Bl/J6 mice were obtained from The Jackson Laboratory./p>5 weeks) animals were anaesthetized with urethane (1.5 g kg–1) and placed on a heating pad. The head and neck were shaved and local anaesthesia (lidocaine HCl, 2%) was administered to the scalp and neck. An incision was made in the skin, and the muscle of the dorsal aspect of the neck was cut and moved aside to expose the brainstem. A head plate was attached to the skull using dental cement and the head was fixed to a custom-built frame. The dura overlying the brainstem was cut and small fragments of the occipital bone were removed. In some cases in which optical access to the DCN was required, small amounts of the posterior vermis of the cerebellum were aspirated to expose the DCN. A glass electrode filled with saline (2–3 MΩ) was put in place 200–300 µm above the gracile nucleus. The area was then flooded with low-melting point agarose dissolved in saline. After the agarose hardened, the electrode was advanced into the gracile. The electrode was guided to individual units and positioned to maximize the signal of a single unit. Recording quality and unit discrimination were continuously assessed using an audio monitor and online analysis of amplitude and spike waveforms. All recordings in the DCN were made in the hindlimb representation region of the gracile nucleus, and only units with receptive fields in the hindlimb were recorded. Recordings were targeted to the rostral–caudal level approximately where the gracile diverges bilaterally (see example in Extended Data Fig. 1) where units receiving input from the hindlimb digits and pads were most abundant. Although it has been reported that the gracile in rats, cats and primates is subdivided into ‘core’ and ‘shell’ regions, we were unable to detect clear organization in the mouse through electrophysiology experiments. Signals from single units were amplified using the ×100 AC differential amplification mode of a Multiclamp 700B instrument and sampled at 20 kHz using a Digidata 1550B controlled by Clampex 11 software (Molecular Devices). Signals were collected with an additional 20× gain, a 0.3 kHz high-pass filter and a 3 kHz Bessel filter./p>10 mN) at baseline and became mechanically insensitive following DCN lesion were not included for analysis because the stimulus may have been off the centre of the receptive field./p>

300 Hz and often up to 500 Hz), and do not have inhibitory surrounds. The broad receptive field and entrainment to high frequencies suggest that they receive strong input from Pacinian corpuscles. Spatially-tuned (ST) units have small receptive fields, typically consisting of 1-2 digits or pads, or a small portion of the heel. They often have inhibitory surrounds, and can entrain their firing to modest vibration frequencies (up to 100–200 Hz). These units cannot entrain their firing to vibration frequencies > 300 Hz, even at high forces. Contact-tuned (CT) units have receptive field sizes similar to spatially-tuned units, but are poorly activated by vibration. They are very sensitive and almost exclusively responsive to the initial contact of a stimulus. a, Example receptive field of a vibration-tuned IC-PN. Color scale of normalized firing rate shown at bottom. b, Example rasters of a vibration-tuned IC-PN unit in response to 50 (top) or 500 Hz (bottom) vibration. c, Responsiveness of vibration-tuned IC-PN units to different vibration frequencies (10–20 mN). Data is shown for individual units (gray) and average across units (black). d–g, Vibration-tuned units had different sensitivities to different frequencies of vibration. When reducing the force of vibrations to near-threshold (<10 mN), 300 Hz vibrations evoked more robust responses in the heel, whereas 10 Hz vibrations typically only evoked responses when stimulating the digits. d, Receptive field map of near-threshold 300 Hz vibration for an identified vibration-tuned IC-PN (left). Example trials from the heel (top right) and digits (top left) are shown. Color scale of normalized firing rate shown at bottom. e, Same as in d, but for 10 Hz near-threshold vibration. Color scale of normalized firing rate shown at bottom. f, Average histograms for individual units of near-threshold 300 Hz vibration delivered to the heel (top) or digits (bottom). Color scale of Z-scores shown at right. g, Average histograms for individual units of near-threshold 10 Hz vibration delivered to the heel (top) or digits (bottom). Color scale of Z-scores shown at right. h–j, Same as a-c, but for spatially-tuned units. k–m, Same as a–c, but for contact-tuned units. n, Distribution of functional types for units antidromically activated from the IC. o, Functional types were generalized to classify VPL-PNs. Units antidromically activated from the VPL were almost all spatially-tuned. Their receptive fields were small and did not phase-lock to high frequency vibration (>300 Hz), even when increasing the amplitude. These units also typically did not elevate their firing in response to high-frequency vibration. 1/39 units were found to be vibration-tuned. p, Receptive field area for spatially-tuned units antidromically activated from the IC or VPL. Distributions are significantly different (p = 0.031, Kolmogorov-Smirnov test). Individual units (gray) and mean ± s.e.m. (black). q, Proportion of units with inhibitory surrounds for each functional type. All data shown as n units in N animals (n/N)./p>

300 Hz) vibration, even at high forces. a, Top: Traces of single control and silencing trials. A 100 ms, 50 Hz, 10 mN vibration was applied. Timing of light delivery is denoted by a green ramp. Middle: Raster of trials for 50 Hz vibration. Control and light trials are separated by a dashed green line. Bottom: Average histogram for this unit when light was off (Control) or on (+Light). Time 0 is the onset of vibration. Bins are 1 ms. b, Same unit as in a, but for a 200 ms 10 Hz 10 mN vibration. c, Same unit as in a and b, but for a 200 ms 10 mN indentation. d-f, A DCN unit that was antidromically activated from the IC. This unit entrained to 300 Hz vibratory stimuli and had a large receptive field. d, Top: Traces of single control and silencing trials. A 100 ms, 300 Hz, 10 mN vibration was applied. Middle: Raster of trials for 300 Hz vibration. Control and light trials are separated by a dashed green line. Bottom: Average histogram for this unit when light was off (Control) or on (+Light). Time 0 is the onset of vibration. Bins are 1 ms. e, Same unit as in d, but for a 200 ms 10 Hz 10 mN vibration. f, Same unit as in d and e, but for a 200 ms 10 mN indentation./p>

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